产品详情实验步骤说明书下载
PAS染色（Periodic Acid-Schiff Stain） 是一种特异性显示 多糖、糖蛋白、糖脂和黏蛋白 的组织化学染色方法，广泛应用于病理学（如糖原贮积病、真菌感染）和生物学研究。
染色机制：
过碘酸氧化：
过碘酸（HIO₄）氧化糖类中的 邻二羟基 为 醛基。
Schiff试剂反应：
醛基与Schiff试剂（无色品红）结合，形成 紫红色沉淀。
复染（可选）：
苏木素或甲基绿复染细胞核，增强对比度。
染色结果：
糖原、黏液、基底膜、真菌细胞壁：紫红色
细胞核：蓝色（苏木素复染后）
背景：浅粉色或无着色
常见问题及解决方案
| 问题 | 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|---|
| 无紫红色阳性信号 | 过碘酸失效/Schiff试剂失效 | 更换试剂，延长氧化或染色时间 |
| 背景过深 | Schiff试剂污染或未充分洗涤 | 严格避光操作，延长亚硫酸氢钠洗涤时间 |
| 非特异性染色 | 醛基残留（如福尔马林固定） | 增加亚硫酸氢钠洗涤或改用乙醇固定 |
| 切片脱落 | 脱蜡不彻底或载玻片未包被 | 优化脱蜡步骤，使用多聚赖氨酸载玻片 |
1. 样本准备
组织固定：10%中性福尔马林或乙醇固定（糖原需乙醇固定避免溶解）。
石蜡切片：4~5μm厚度，60℃烘片1小时。
2. 染色流程
脱蜡至水：
二甲苯→梯度乙醇→蒸馏水，每级5分钟。
过碘酸氧化：
1%过碘酸浸泡5~10分钟→蒸馏水冲洗2分钟。
Schiff试剂反应：
Schiff试剂避光浸染15~30分钟（室温）。
洗涤：
亚硫酸氢钠溶液（或流水）冲洗3次，每次2分钟→流水冲洗10分钟。
复染（可选）：
苏木素染核1~2分钟→流水蓝化10分钟。
脱水透明：
梯度乙醇→二甲苯，每级2分钟。
封片：中性树胶封片。
3. 镜检结果
阳性物质（糖原、真菌等）：紫红色
细胞核：蓝色（复染后）
阴性组织：无色或淡粉色
注意事项
1. 样本处理
糖原保存：需用 无水乙醇固定（福尔马林会溶解糖原）。
避免污染：操作中防止唾液或汗液污染（含糖原）。
2. 染色控制
过碘酸时间：
过短（<5分钟）→氧化不彻底，假阴性；
过长（>15分钟）→组织损伤。
Schiff试剂：
避光保存，变红即失效（应为无色或淡黄色）。
3. 试剂保存
Schiff试剂：4℃避光保存，有效期3~6个月。
过碘酸：现用现配或分装避光保存（易分解）。